"ROSA DE BENGALA Y TIEMPO DE SANGRADO"

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO industrial y de servicios No. 199

"EMILIANO ZAPATA SALAZAR"

SUBMODULOS: Realiza análisis hematologicos de serie blanca y hemostasia.

Analiza y fracciona sangre con fines transfucionales.

PRACTICAS:

"ROSA DE BENGALA Y TIEMPO DE SANGRADO"

Prueba de aglutinación rápida en placa para la detección temprana de aglutininas especificas de Brucella (Brucella mellitenis , abortus y suis).

PRINCIPIO:

Se utiliza un antígeno de Brucella abortus biotipo teñido con Rosa de Bengala a un pH de 3.65 +/- 0.05 para la detección de aglutininas especificas de Brucella. Esta prueba puede ser utilizada para un diagnostico temprano.

REACTIVOS:

Antígeno Rosa de Bengala

Control Positivo de Brucella 

Control Negativo de Brucella

PRECAUCIONES: Únicamente para uso de diagnostico In-vitro.

ALMACENAMIENTO Y ESTABILIDAD DE LOS REACTIVOS:

El reactivo y los controles son estables de 275-281 K (2°-8°) hasta sus respectivas fechas de caducidad.

MATERIAL PROPORCIONADO:

Placa de prueba ( se recomienda que siempre se utilice una placa de vidrio para una mejor observación de los resultados).

Pipetas  desechables

El gotero incluido proporciona una gota de 30-40 ul.

Se sugiere utilizar pipetas automáticas preferentemente.

MATERIAL REQUERIDO (NO PROVISTO):

Cronometro

RECOLECCIÓN DE MUESTRA Y PREPARACIÓN:

Se recomienda que únicamente se utilice suero.

Evite la hemolisis o lipemia de las muestras ya que esto puede inferir con los resultados conservara la muestra de 275-288 K(2-8°C) si no se va a  realizar el estudio en el momento.

PROCEDIMIENTO:

1. Llevar a temperatura ambiente el reactivo controles y muestras del suero.

2. Utilizando la pipeta automática adiciones 30ul de la muestra del paciente e un circulo de la placa.

3. Mezcle suavemente en Antígeno de Rosa de Bengala hasta que se encuentre totalmente homogéneo después coloque 30ul en la placa de prueba en el mismo circulo donde se coloco la muestra del paciente, mezcle ambas con un aplicador( usar un aplicador diferente para cada muestra de paciente y controles.

4. Agitar la placa con movimiento rotatorios por 4 minutos.

5. Con la ayuda de una fuente de luz directa lea el resultado. Importante Después de este tiempo la lectura ya no es valida.

RESULTADOS:

La lectura debe llevarse acabo exactamente a los 4 minutos tomados a partir de que se comenzó al mezclar. Este es un tiempo limite optimo en el que se da un tiempo limite optimo en el que se da un espacio para la observación de ciertas aglutininas que se revelan lentamente y que de otra manera se puede omitir, ademas de que se pueden presentar reacciones no especificadas.

*NO AGLUTINACIÓN- Suero  Negativo.

*Cualquier cantidad de Aglutinación-Presencia de anticuerpo específicos. Suero Positivo.

Esta es solo una prueba cualitativa  de screening la cual si resulta positiva  debe ser confirmada  mediante otra prueba cuantitativa para brucelosis como: Aglutinación lenta estandar o Aglutinación lenta en Presencia de ".- Mercapentano..

NOTA: El aislamiento del agente etiologico mediante hemocultivos es de suma importancia .

SENSIBILIDAD: 25 Ul/mL.

RESULTADOS:

MUESTRA 1: No presento AGLUTINACIÓN.

CONCLUSIÓN:

EN ESTA PRACTICA SE REALIZO LA PRUEBA LLAMADA ROSA DE BENGALA QUE NOS SIRVIÓ PARA IR REFORZANDO CONOCIMIENTOS, ESTO CON EL FIN DE ENCONTRAR AGLUTININAS DE BRUCELLA EN DIFERENTES TIPOS UTILIZANDO REACTIVOS ATEMPERADOS PARA SU CORRECTO  DIAGNOSTICO Y ASI EVITAR FALSOS POSITIVOS, CABE MENCIONAR QUE TODAS ESTAS PRUEBAS SE REALIZAN CON TODAS LAS MEDIDAS DE PRECAUCIÓN NECESARIAS. 

"TIEMPO DE SANGRADO"

OBJETIVO

Que al termino de la practica realice el tiempo de sangrado por cualquier de los dos métodos existentes.

INTRODUCCIÓN

Un tiempo de sangrado normal indica una retracción normal de los capilares y la existencia de un numero suficiente de plaquetas, con actividad normal.

La metamorfosis viscosa normal depende de un buen mecanismo extrinseco de producción de tromboplastina, por lo tanto, el tiempo de sangrado se alarga en la insuficiencia del factor  Vll. El tiempo de sangrado aumenta en forma caracteristica en la purpura  trombocitopenica.

METODOLOGÍA

Se utiliza el "Método De Duke"

MATERIAL

Lanceta estéril 

Torundas alcoholadas 

Reloj cronometro

Papel filtro

TÉCNICA

1.- Con una lanceta estéril, se practica en el borde inferior del lóbulo de la oreja una punción de 3mm. de profundidad. Se pone en marca el cronometro.

El borde debe ser profundo, y no debe de abarcar venas visibles.

2.- A intervalos de medio minuto, se aplica cuidadosamente, sobre la gota de sangre el borde de un pequeño papel filtro, cuidando de no tocar la piel. Esta maniobra por objeto es impedir que se forme coagule la gota de sangre sobre la herida ,pues los tiempos de sangrado resultaran anormalmente bajos.

3.- Utilizando una nueva zona de papel filtro para cada secado de medio minuto, puede tener un registro conveniente del tiempo total (tiempo en minutos = numero de gotas divididas entre dos ) se toma como punto final al momento en el cual el papel filtro ya no absorbe sangre.

TIEMPO DE SANGRADO NORMAL CON EL MÉTODO DE DUKE

De uno a tres minutos (si embargo, puedo ser a veces hasta cinco minutos en sujetos normales).

MÉTODO DE IVY

TÉCNICA 

1. Se coloca alrededor del brazo un manguito de esfindonometro con el cual se ejerce precio de 40 mm. De Hg. Que debe permanecer aquel durante toda la prueba.

2. Utilizando una lanceta estéril se hace a intervalos de cortos tres punciones (entre 2.5 y 3.0 mm de profundidad), a lo  largo de la cara flexora (interna) el antebrazo, evitando las venas visibles. Se pone en marcha el cronometro.

3.- A intervalos  de medio minuto , utilizando papel filtro se seca cuidadosamente cada gota de sangre en la misma forma que para el método  de DUKE, el punto final es el mismo.

 TIEMPO NORMAL DE SANGRADO EN EL MÉTODO DE IVY.

ENTRE 2 Y 6 minutos (máximo de 7 minutos).

NOTA: el tiempo de sangrado representa sencilla y útil (aunque algo imprecisa) de la eficacia de las funciones capilares y de plaquetas  en la hemostasia. Es preferible el método de IVY al de DUKE,pues las condiciones son mas contantes y se realizan en realidad 3 pruebas.

RESULTADOS:

EN EL MÉTODO DE DUKE SE OBTUVO UN TIEMPO DE SANGRADO DE:

2:00 MINUTOS .

EN EL MÉTODO DE IVY SE OBTUVO UN TIEMPO DE SANGRADO DE:

3:35 MINUTOS.

CONCLUSIÓN:

EN ESTA PRACTICA SE ESTUDIO EL TIEMPO DE SANGRADO DE UN PACIENTE ESTO CON EL FIN DE OBTENER LA INFORMACIÓN NECESARIA CON EL OBJETIVO DE CONOCER LA RETRACCIÓN CAPILAR ASÍ COMO LA CANTIDAD SUFICIENTE DE PLAQUETAS EN EL ORGANISMO DE PACIENTE, OBTENIENDO UNOS RESULTADOS FAVORABLES.

  

"VDRL-USR"

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO industrial y de servicios  No. 199
                                           "EMILIANO ZAPATA SALAZAR"

"VDRL-USR"

Antigeno de cardiolipina para investigar reaginas de la sifilis en suero sin inactivar, en Plasma y L.C.R (no requiere reconstitucion)

Agente de Diagnostico

Itroduccion:

La sifilis es una enfermedad generalizada, producida por treponema pallidum, trasmitida habitualmente por contacto sexual.

El diagnostico descnsa en la serologia: los metodos determinan dos clases de anticuerpos: 1) Tipo "cardiolipina" no treponema e inespecificos  y 2) Los antitreponemas especificos. La facilidad para su determinacion ha hecho que los del tipo cardiolipina se utilicen universalmente en las exploraciones iniciales ya sean examenes individuales o encuestas de poblacion: la variantes tecnica mas comunmente empleada es la llamada VDRL (Veneral Disease Research Laboratory) que determina la floculacion en placa (cuantitativa) del antígeno con cardiolipina y lectina.

Reactivos y material proporcionado

-Antígeno en suspencion estabilizado (VDRL)

-Control positivo

-Control negativo

-Aguja No.21 sin bisel

-Pipetas desechables (unicamente para presentaciones de 100 pruebas).

Estabilidad y almacenamiento del reactivo

El antigeno de VDRL y los sueros controles son estables hasta su fecha de caducidad indicada en la etiquetas cuando se almacena de 2 a a 8°C No congelar.

Material y equipo necesario no proporcionado

-Placa concava (indispensable)

-Agitador mecanico

-Cronometro

-Microscopio

Obtención de la muestra

1.Obtener 3.0 ml de sangre por puncion venosa

2. Centrifugar y separar el suero

Método cualitativo:

1. En un anillo de una placa concava deposite 0.05 mL de suerro problema

2. En anillos diferentes colocar una gota se suero control positivo y en otra por separado una gota de control negativo, extender sobre la superfice del anillo.

3. Añadir una gota del antigeno en supencion estabilizado previamente suspendido, en cada una de las muestras utilizando la aguja No. 21 sin bisel.

4. Colocar la placa sobre un agitador mecanico a 180 rpm DURANTE 4 MINUTOS. Las pruebas realizadas en un clima extremadamente seco puede provocar la evaporacion de las muestras , por lo tanto, la placa en rotacion puede ser cubierta con una tapa de caja petri humedecida con una gasa

5. Leer inmediatamente al microscopio con Objetivo y Ocular 10 X.

Interpretación:

Control Positivo

Presencia de floculacion mediana o grande

Control Negativo

Ausencia de floculacion

RESULTADOS:

En esta prueba se analizaron muestras que salieron negativas en la prueba VDRL que esto indica que el paciente no a estado en contacto con treponema pallidum.

pero se observaron tambien que presento aglutinacion en la prueba que esto indica que el paciente si esta contagiado con treponema pallidum.

CONCLUSIÓN:

Con esta prueba pudimos observar la aglutinación que se presenta con la presencia de treponema pallidum  que desafortunadamente afecta a muchas personas que han estado en contacto con personas contagiadas.

RECUENTO DE PLAQUETAS

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO 

industrial y de servicios No. 199

RECUENTO DE PLAQUETAS

OBJETIVO: QUE EL ALUMNO APRENDA A CONTAR CORRECTAMENTE LAS PLAQUETAS.

INTRODUCCIÓN:

Las plaquetas son los elementos formes mas pequeños de la sangre, actúan en la hemostasia y en el mantenimiento de la integridad vascular, ademas de participar en el proceso de la coagulación sanguínea.

Las plaquetas son difíciles de contar debido a que son pequeñas y deben distinguirse de los restos celulares. Otra fuente de dificultad reside en su tendencia de adherirse al cristal a cualquier cuerpo extraños y en particular unas de otras.

Para el conteo de plaquetas se utiliza oxalato de amonio como diluyente y se cuentan en los mismos cuadros para glóbulos rojos y el resultado se multiplica por 1000.

MATERIAL  Y REACTIVOS.

1.- Pipeta de thoma para glóbulos blancos

2.- Microscopio

3.- Cámara de Neubauer

4.- Caja de petri con papel filtro

5.- Oxalatos de amonio al 1%

6.- Sangre venosa con EDTA

PROCEDIMIENTO

1.- Mezclar la sangre perfectamente 

2.- Aspirar la muestra hasta la marca 0.5

3.- Limpiar con una gasa el exceso de sangre y aspirar oxalato de amonio hasta la marca 11.

4.- Mezclar de 3 a 5 min. desechar las 3 primeras gotas y llenar las cuadriculas de la cámara de Neubauer 

5.- Dejar sedimentar  de 10 a 15 min. La cámara en una caja petri con un disco de papel filtro húmedo en el fondo para evitar la evaporación.

6.- Enfocar la cámara y contar las plaquetas en los mismos cuadros para glóbulos rojos empleando  el objetivo 40X.

7.- Las plaquetas contadas se multiplican por 1000 para obtener el numero de plaquetas por mm.

VALOR DE REFERENCIA 

150000 A 450000 / mm3

CUADRO SUPERIOR IZQUIERDO

29 PLAQUETAS

CUADRO SUPERIOR DERECHO

36 PLAQUETAS

CUADRO INFERIOR IZQUIERDO

50 PLAQUETAS

CUADRO INFERIOR DERECHO 

43 PLAQUETAS

CUADRO CENTRAL

32

SE REALIZO LA SUMA Y SE MULTIPLICO POR 1000

29+36+50+43+32= 190X1000= 190000

CONCLUSIÓN

COMO SE PUDE OBSERVAR LOS RESULTADOS OBTENIDO ENTRARON DENTRO DE VALOR DE REFERENCIA QUE ES MENCIONADO ANTERIORMENTE AUNQUE CABE MENCIONARE QUE ESTÁN UN POCO BAJOS SOBRE EL NIVEL DEL LIMITE INFERIOR DE REFERENCIA. 

"MÉTODO DE TUBO DE ENSAYE"

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO industrial y de servicios no.199

GRUPO SANGUÍNEO 

MÉTODO EN TUBO DE ENSAYE

TÉCNICA: Previa asepsia practicar venopuncion y recoger 1ml de sangre 

Depositar en un tubo de ensaye , 2ml  de sangre y 9.8ml de sol isotónica de NaCl al 0.9% par formar una suspención de eritrocitos al 2%.

Marcar 3 tubos de ensaye con las letras A, B, Rh respectivamente depositar en el tubo "A" una gota de suero Anti-A en el tubo B una gota de suero Anti-B y en el tubo Rh una gota de suero Anti-D.

Añadir a cada tubo una gota de suspención de eritrocitos al 2% (preparadas con anterioridad)

Centrifugar a 1000 r.p.m durante un minuto.

Sacar los tubos e inmediatamente observar si existe aglutinación.

INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS

Si existe aglutinación en el tubo "A" la sangre es del tipo "A"

Si existe aglutinación en el tubo "B" la sangre es del tipo "B"

Si existe aglutinación en los tubos A y B la sangre el del tipo "AB"

Si no existe aglutinación en los tubos A y B la sangre es del tipo "O"

Si existe aglutinación en el tubo Rh la sangre sera factor Rh positivo

si no existe aglutinación en el tubo Rh la sangre sera factor Rh negativo

GRUPO 

SANGUÍNEO

ANTISUEROS

                   ANTI A                              ANTI B                              ANTI AB                      ANTI D

A            Aglutinación                          No  Aglutinación               Aglutinación               No  Aglutinación 

B           No Aglutinación                     Aglutinación                      Aglutinación               No  Aglutinación 

AB         Aglutinación                          Aglutinación                     Aglutinación               No   Aglutinación 

O            No  Aglutinación                   No  Aglutinación              No  Aglutinación        Aglutinación 

D            No Aglutinación                    No  Aglutinación              No  Aglutinación        Aglutinación 

CONCLUSIÓN 

Esta es una nueva forma en la que podemos saber el grupo sanguíneo del paciente pero empleando un material extra, llamada centrifuga que nos sirve para poder sedimentar las células sanguíneas en el tubo de ensaye esto con el fin de tener un resultado mas eficaz en la determinación de su grupo.

GRUPO SANGUÍNEO Y RH

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO industrial y de servicios No. 199

PRACTICA No4

GRUPO SANGUINEO Y Rh

DETERMINACIÓN DE AGLUTINOGENOS (TIPADO GLOBULAR)

Principio: En la membrana del glóbulos rojo existen complejos químicos llamados antígenos que representan los llamados  grupos o factores sanguíneos .

se sabe que estos complejos químicos se han generado de una sustancia llamada precursora, llamada sustancia H (humana). Sobre esta sustancia se adhieren carbohidratos en un orden determinado. Para la sangre de tipo de cero "O" se unen dos moléculas de glactosa, una de mucosa  y una de glucosamina.

sobre esta cadena puede adherirse una nueva molécula y se cambia el tipo, si es de glucosamina se tiene le grupo "A" y si es de glactosa se tiene el grupo "B". Si se unen ambas moléculas en diversa posición se tiene el grupo AB:

Los primero grupos sanguineos que se descubrieron  fueron los llamdos ABO, y actualmente se conocen muchos mas.

El sistema Rh es independiente del sistema ABO, pero igual de importante en la tipificación sanguinea.

hay antigenops presentes en los eritrocitos de casi todas las persona y se les llama Universales, otros antígenos se han concentrado en una sola familoia y se les llama personales.

la importancia de la determinación de los grupos sanguineos y rh en el laboratorio es en las transfisiones sanguineas y en la eritroblastosis fetal.

FACTOR Rh

OBJETIVO: El alumno determinara el grupo sanguineo y el factor Rh de una mestra sanguinea, utilizando los antisueros correspondientes y previa demostracion correctamente.

INTRODUCCIÓN: Los grupos sanguineos se han clasificado asi por poseer caracteristicas diferentes, estas caracteristicas son los antigenos (Aglutinogenos) y los anticuerpos (Aglutininas ) que son los responsables de las reacciones adversas inmunológicas en las tranfusiones.

MATERIAL                                                                                            REACTIVOS

1 EQUIPO DE EXTRACCION SANGUINEA                                SUERO ANTI A

1 PLACA DE VIDRIO EXCAVADA                                               SUERO ANTI B

10 APLICADORES DE MADERA (PALILLOS)                             SUERO ANTI D

LANCETA ESTERIL                                                                        SOL. ISOTONICA

4 TUBOS DE ENSAYE 10 x 100                                                      DE NaCL AL 0.9%

GRADILLA

CENTRIFUGA

MÉTODO PARA PORTAOBJETOS O PLACA:

TÉCNICA: Se utiliza la punción cutánea por medio de la lanceta, se desecha la primera gota y se deposita 1 gota en cada una de la excavaciones de la placa en forma horizontal o marcar con letras A, B, y Rh, posteriormente se añade una gota de suero Anti A, Anti B, Anti D respectivamente.

Mezclar perfectamente con un hisopo (aplicador) cada preparacion (No contaminar las diferentes preparaciones).

Agitar suavemente la placa con movimientos circulares durante 30 segundos aproximadamente.

Leer el resultado (una aglutinación macroscopica indicara la reacción).

Anti A                     Anti B                                Anti D                El grupo sanguíneo y su factor sera:

  +                               -                                         +                          A Rh Positivo

  +                               -                                         -                           A Rh Negativo 

  -                                +                                        +                          B Rh Positivo

  -                               +                                         -                           B Rh Negativo

  +                              +                                         +                          AB Rh Positivo

  +                              +                                         -                           AB Rh Negativo

  -                               -                                         +                           O Rh Positivo

  -                               -                                         -                            O Rh Negativo

En donde (+) Existencia de aglutinación 

                (-) Ausencia de aglutinación

CONCLUSIÓN:

EN ESTA PRACTICA RETOMAMOS LOS CONOCIMIENTOS YA ADQUIRIDOS EN LA PRACTICA DE LA DETERMINACIÓN DE GRUPOS SANGUÍNEOS, ASÍ MISMO HAY QUE TOMAR EN CUENTA QUE ESTO ES UNO DE LOS MUCHOS PASOS QUE SE REALIZAN PARA SABER SI UNA PERSONA ES COMPATIBLE CON  EL FIN DE REALIZAR UNA TRANSFUSIÓN SAGUINEA. 

"RECUENTO DIFERENCIAL DE LEUCOCITOS"

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO INDUSTRIAL Y DE SERVICIOS No. 199

MIXQUIAHUALA, HGO.

RECUENTO DIFERENCIAL DE LEUCOCITOS

INTRODUCCIÓN

El recuento diferencial de leucocitos consiste en reconocer y valorar las proporciones relativas de las distintas variedades de globulos blancos que se observan en frotis teñido de sangre .

al conocer la proporcion de la celulas sanguineas que estan presentes en el torrente sanguineo cualquier transtorno patologico que altere el sistema hematopoyetico podria verse reflejado en un cambio de la proporcion de una especie celular. Para el recuento diferencial si tienes que observar un minimo de 100 leucocitos.

Hay varios metodos de recuento diferencial de leucocitos pero el mas utilizado es en de almena en linea.

MATERIAL Y REACTIVOS

1. Frotis sanguíneo teñido

2. Microscopio

3. Aceite de inmersión

4. Un contador de células 

PROCEDIMIENTO

1. Se coloca el frotis en el microscopio y se enfoca

2. Se le agrega una gota de aceite  de inmersión y se observa con el objetivo de 100X

3. Si el recuento se hace en linea se empieza en un borde del frotis hasta el otro borde en linea paralela hasta contar 100 leucocitos.

4. Se van contando los mononucleares (monocitos y linfocitos) y polimorfonucleares (neutrofilos, eosinofilos y basofilos) según  su morfología.

5. Se reporta en % (valor relativo) en valor absoluto (mm3).

VALORES DE REFERENCIA

                                                  ADULTOS                                                 NIÑOS

LINFOCITOS                          20-55%                                                       20-50%

MONOCITOS                         2-6%                                                            0-9%

EOSINOFILOS                       1-5%                                                            0-8%

BASOFILOS                            0-1%                                                           0-1%

NEUTROFILOS                      45-70%                                                       20-60%

BANDAS                                  0-5 %                                                          1-6%

CONCLUSIÓN

CON ESTA PRACTICA SE PUDO IDENTIFICAR LA CANTIDAD QUE HAY DE LOS DISTINTOS TIPOS DE GLOBULOS BLANCOS EN LA SANGRE ESTO CON EL FIN DE DIAGNOSTICAR ALGUNA ENFERMEDAD QUE ALTERE EL FUNCIONAMIENTO DEL ORGANISMO TOMANDO COMO VALORES DE REFERENCIA LOS RESULATADOS ANTERIORMENTE MENCIONADOS.

"CONTEO DE LEUCOCITOS"

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO INDUSTRIAL

 Y DE SERVICIOS No. 199

MIXQUIAHUALA, HGO.

PRACTICA No. 1

"CONTEO DE LEUCOCITOS"

INTRODUCCIÓN 

El conteo de los elementos formes de la sangre es indispensable para la hematologia diagnostica. Para contar los leucocitos se diluye una cantidad exacta de snagre con el liquido de Turk, que es una silucion hipotonica que destruye a los eritrocitos y conserva la estructura de los leucocitos, esta mezcla se coloca en una camara de Neubauer y se cuenta el numero de celulas en los cuadros indicados.

MATERIAL Y REACTIVOS

1. Pipeta de thoma para globulos blancos.

2.  Una cámara de Neubauer.

3.  Un microscopio. 

4. Solución de Turk

5. Gasas.

6. Sangre venosa con EDTA.

PROCEDIMIENTO

1. Obtener sangre venosa con EDTA y mezclar perfectame.

2. Aspirar sangre con la pipeta de thoma hasta la marca 0.5

3. Limpiar la parte externa de la pipeta con gasa o papel absorbente.

4. Aspirar liquido de Turk hasta la marca 11.

5. Retirar la boquilla de la pipeta y sellar los extremos con papel parafilm.

6. Agitar la pipeta de thoma de 3 a 5 min y preparar la camara con el cubrehematimetro.

7. Descartar las primeras 3 gotas y llenar la camara por capilaridad por uno de los bordes del cubirhematimetro, sin que se formen burbijas o sobrepasen los canales de la camara.
8. Dejar reposar de 3 a 5 min. la camara con la muestra.
9. Enfocar la camara en 1 microscopio y contar los leucocitos con el objetivo seco debil en 64 cuadros de las cuatro cuadriculas de los extremos.
10. Multiplicar el numero de leucocitos contados por 50.

RESULTADOS

1er                           2da                                3er                            4ta

cuadricula               cuadricula                     cuadricula                 cuadricula

2                              2                                      1                                 4

3                              4                                      2                                 5

2                              2                                      4                                 3

2                              2                                      3                                 1

1                              3                                      2                                 2

2                              1                                      2                                 2

1                              1                                      1                                 1

3                              2                                      2                                 3

2                              3                                      3                                 2

2                              2                                      4                                 1

4                              3                                      1                                 1

3                              1                                      2                                 2

2                              2                                      3                                 3 

1                              3                                      2                                 2

3                              3                                      2                                 2

5                              2                                      3                                 1

PARA EL CONTEO DE LOS LEUCOCITOS NOS APOYAMOS DE LAS CUADRICULAS DE LAS ESQUINAS DE LA CÁMARA DE NEUBAUER (SEÑALADAS CON LA LETRA   "L" )

la suma de las cuatro cuadriculas dio como resultado 146
multiplicado por 50 
146X50= 7300 leucocitos/mm3.
CONCLUSIÓN:
En esta practica se realizo en recuento de leucocitos apoyandonos de diferentes materiales entre ellas una camara de neubauer que sirvio para poder contar los leucocitos, tomando en cuenta el resultado llegamos a la conclusión de que el paciente al que se le tomo la muestra sus leucocitos se encuentran en una buena cantidad que la misma entra dentro del valor de referencia.

VALOR DE REFERENCIA

5000 A 10000/mm3